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kFluor555-EdU法細胞增殖檢測試劑盒(流式)實驗報告

更新時間:2023-01-18      點擊次數:837

kFluor555-EdU法細胞增殖檢測試劑盒(流式)實驗報告:


一、分離與培養:


1、無菌條件下,取出1-3d 齡SD大鼠心房組織,然后用PBS將此組織塊清洗2次,最后將組織剪成1mm3左右大小;


2、往組織塊中加入4 mL酶消化液(0.1% 和0.1% I型膠原酶),混懸10s,置37℃條件下消化10min,之后用滴管吹打制成單細胞懸液,自然沉淀并收集上清,用含10% FBS培養基終止消化后4℃放置;


3、剩下的組織再加入3~4mL酶消化液,混懸10s,置37℃消化10 min后,按上述方法收集上清并終止消化后4℃放置,重復此步驟2-3次,直至組織*被消化;


4、用200目不銹鋼篩網過濾細胞消化液,1200r/min 離心10min,棄去上清,沉淀細胞用含有10% FBS DMEM/F12培養基混懸,接種于25cm2培養瓶,放置于37℃ ,5%CO2 培養箱中培養;


5、差速貼壁1h后,吸出培養基,按實驗需要接種于6孔板中繼續培養;


二、免疫熒光鑒定:


1、待心房肌細胞生長至80%融合時,棄去培養基,用溫育的PBS沖洗細胞2次,每次10min,然后用4%多聚甲醛在室溫條件下固定細胞15min;


2、PBS沖洗細胞2次,每次10min,然后在4℃條件下,用0.1%Triton X-100透膜15min;


3、PBS沖洗細胞2次,每次10min,然后在室溫條件下,用4% BSA封閉細胞30min;


4、按1: 100的比例稀釋α-actin一抗,然后將其放在4℃冰箱中孵育細胞過夜;


5、PBS沖洗細胞3次,每次10min,按1:150的比例稀釋抗α-actin的二抗, 37℃條件下放置1h;


6、用PBS沖洗3次,每次10min,最后在倒置熒光顯微鏡下觀察圖像并拍照。

小鼠胰島素(mouse Insulin)

小鼠抑制素A(mouse Inhibin A)

小鼠抑制素B(mouse Inhibin B)

小鼠IP-10(mouse IP-10)

小鼠8異前列腺素(mouse 8-iso-PG)

小鼠白三烯B4(mouse LTB4)

小鼠瘦素(mouse Leptin)

小鼠瘦素受體(mouse Leptin receptor)

小鼠促黃體生成激素(mouse LH)

小鼠巨嗜細胞趨化蛋白-1(mouse MCP-1)

小鼠巨噬細胞來源的趨化因子(mouse MDC)

小鼠髓過氧化物酶(mouse MPO)

小鼠粘蛋白(mouse MUC5AC)

小鼠肌肉生成抑制素(mouse Myostatin)

小鼠巨噬細胞游走抑制因子(mouse MIF)

小鼠巨嗜細胞炎性蛋白-1(mouse MIP-1)

小鼠巨嗜細胞炎性蛋白-2(mouse MIP-2)

小鼠巨嗜細胞炎性蛋白-3a(mouse MIP-3a)

小鼠巨嗜細胞炎性蛋白-3β(mouse MIP-3β)

小鼠巨嗜細胞炎性蛋白-1a(mouse MIP-1a/CCL3)

小鼠基質金屬蛋白酶-1(mouse MMP-1)

小鼠基質金屬蛋白酶-2(mouse MMP-2)

小鼠基質金屬蛋白酶-3(mouse MMP-3)

小鼠基質金屬蛋白酶-9(mouse MMP-9)





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